Sistema CASA de análisis espermático

Un sistema CASA de análisis espermático es aquel que tiene como objetivo fundamental realizar un análisis preciso, basado en la repetición y realizado de manera automática, de algunos parámetros que aparecen en una muestra espermática.

Los datos más habituales que se solicitan y ofrecen son: concentración, movilidad, morfología, fragmentación de ADN, vitalidad, reacción del acrosoma y leucocitos.

Aunque hay sistemas que, dependiendo de su complejidad y de las variables que trabajan, ofrecen más o menos resultados en este sentido.

 

Sistema CASA

Sistema CASA de análisis espermático

En la empresa valenciana Proiser llevan más de 25 años trabajando e investigando en esta área. De hecho, son los responsables del Sistema ISAS (Sistema Integrado de Análisis de Semen) , uno de los más prestigiosos del mercado. De ahí que haya recibido numerosos reconocimientos a nivel internacional donde se refieren a él como un elemento indispensable para trabajar adecuadamente en el sector.

Así, gracias a los equipos de investigación, la empresa Proiser ha logrado formar un equipo compacto de desarrolladores de software y científicos, capaces de interactuar y de compartir la información que el cliente necesita.

La irrupción del sistema ISAS en el mercado fue revolucionaria. No sólo porque era la primera solución de este tipo presentada en el mercado. Sino porque marcó un antes y un después en el entorno del diagnóstico de las muestras de semen.

En la actualidad hay variaciones de este concepto que se pueden adquirir en empresas especializadas, aunque la solución ofrecida por Proiser sigue liderando el mercado dada la gran diferencia existente con la competencia. Y es que seguimos inspirando a quienes se dedican a este sector.

Existen aplicaciones adaptadas a las particularidades de cada animal con el que se trabaja. Así, en Proiser ponemos al alcance de los profesionales sistemas de análisis de semen bovino, porcino, de zorros, caballos o incluso de conejos. De manera que puedas conseguir el mejor de los resultados posible.

 

Mucho más que análisis espermático

Para que puedas trabajar con los mejores materiales en la empresa valenciana Proiser también tenemos: cámaras de recuento espermático, placas y platinas calefactadas, así como kits de tinción y de reactivos. Además, de poner a tu disposición software para microscopios, sistemas de medición de ovocitos y todo tipo de microscopios. Elementos de gran calidad con los que poder desarrollar trabajos de gran envergadura.

Así pues, si buscas un sistema de análisis espermático que te dé datos fiables sobre la calidad del material que tienes, no lo dudes y hazte con nuestro sistema CASA de análisis. No sólo tendrás datos fiables, sino que podrás realizar tu trabajo con un mínimo de error.

No lo dudes y ponte en contacto con nosotros. Nuestro sistema es líder del mercado y nuestra atención al cliente y servicio de soporte también.

Sistema CASA

Determinan la calidad del semen de tres especies de interés para la ciencia con ISAS V1

Científicos europeos crean un sistema de determinación de la calidad del semen individualizado. Para el estudio se ha determinado la calidad de muestras de esperma de tres especies de gran interés por razones de conservación o bien por interés del sector acuícola industrial.

Se trata del salmón Atlántico (Salmo salar), de la anguila europea (Anguilla anguilla) y del esturión siberiano (Acipenser baerii).

Salmón atlántico

Esta innovadora técnica de evaluación del esperma es la que usa el software Integrated Semen Analysis System desarrollado y comercializado por PROISER  (ISAS®v1, PROISER R + D, S.L.)calidad del semen

Esta tecnología puede ser implementada fácilmente en criaderos pues en la evaluación de la calidad del semen está en juego la eficacia de la fertilización.

La utilización de un método estandarizado para analizar la calidad del esperma supone una mejora en la confiabilidad de los datos así como en la posibilidad de compararlos entre diferentes laboratorios.

Sin duda se trata de una sólida herramienta para caracterizar los reproductores y hacer una más rápida y eficiente toma de decisiones en los criaderos donde usen técnicas de fecundación in vitro y/o criopreservación de semen.

 

Efecto combinado del tipo y el área de captura de la cámara de conteo en análisis de esperma de toro Holstein

La evaluación del tipo y área de captura de la cámara de conteo en análisis de esperma es clave para evaluar a su vez el movimiento de los espermatozoides y esto es crucial para el procesamiento de dosis seminales en la inseminación artificial.

cámara de conteo en análisis de espermaLa evaluación del movimiento espermático es crucial para la preparación de dosis seminales para la inseminación artificial. En este artículo, se analizó el efecto combinado del tipo y la profundidad de captura de la cámara de conteo en análisis de esperma, para este estudio se analizaron tres, junto con el tipo de diluyente empleado, sobre la motilidad del esperma. Se utilizaron eyaculaciones de trece toros Holstein para el análisis cinemático de los espermatozoides con el sistema ISAS®v1 CASA‐Mot, utilizando dos cámaras de recuento con carga capilar (Leja® y Cell-Vu®) y una cámara de desplazamiento de caída (Makler®). Se analizaron nueve posiciones fijas por tipo de cámara, considerando los campos centrales, lateral y los tres longitudinales. Independientemente del diluyente utilizado, se encontraron diferencias entre las tres cámaras. Tampoco se observaron diferencias en el eje x con Cell-Vu®, mientras que al usar Leja®, algunos parámetros mostraron valores más bajos en el centro que en las áreas laterales. En ambas cámaras de conteo, los valores más bajos se observaron en el área distal. Los resultados obtenidos con los dos diluyentes fueron muy diferentes con una correlación muy baja entre ellos.

En conclusión, el área de captura en la cámara de conteo en análisis de esperma conduce a cambios significativos en los parámetros cinemáticos del esperma y diferentes medios de dilución introducen diferencias considerables en los patrones de motilidad. Es necesario optimizar los métodos de muestreo y las configuraciones específicas que se utilizarán con la tecnología CASA‐Mot.

 Artículo completo en: https://proiser.com/wp-content/uploads/2019/08/Combined-effect.pdf

ISASP – La solución más acertada para la evaluación de muestras seminales

Un sistema para la evaluación de muestras seminales que ayudará a ahorrarte mucho tiempo en el análisis de tus muestras para las dosis que necesitas.

 

Proiser te proporciona una serie de soluciones para la evaluación de muestras seminales de cualquier especie. Como anteriormente hemos hablado, nuestro software ISAS V1 es multi-especie y te da la posibilidad de adquirir mucha información sobre una sola muestra.

Para muchos de nosotros tanta información no es necesaria, ya que lo importante es la calidad de las dosis que podemos producir. Para este caso, te ofrecemos los ISASP, son software de análisis para producción. Estos softwares son más específicos para especies como: cerdo, bovino, quinos, zorros y conejos.

Estos softwares poseen además una sencilla interfaz. En el podrás colocar toda información relevante del animal y la configuración deseada de cantidad útil de espermatozoides por dosis.

Es una fácil opción para la evaluación de muestras seminales que te permite rentabilizar tiempo y asegurar la cantidad de dosis que puedes obtener.

En la ventana principal tendrás disponible:

  • Datos analíticos del caso
  1. Referencia del caso
  2. Fecha y hora
  3. Tipo de muestra
  4. Colector
  5. Operador
  6. Volumen de la dosis

 

  • Captura, análisis y guardar datos
  1. Archivo de captura y análisis
  2. Guardar y nuevo análisis

 

  • Ventana de captura
  • Información general y cálculo de la dosis
  • Gestión y configuración de archivos

 

El sistema analiza características de motilidad, concentración y morfología, célula por célula. Se puede trabajar con muestras frescas como congeladas, siguiendo el protocolo adecuado.

Los softwares también pueden generar dos informes diferentes, ambos en Excel. Uno se refiere al análisis que está haciendo, el otro una lista de todos los informes que ha generado previamente entre dos fechas y/o referencia animal.

 

ISASP es tú mejor solución para el análisis seminal de las granjas de producción!!

Espermigrama y evaluación de la morfometría de la cabeza espermática en adolescentes

Espermigrama y evaluación de la morfometría de la cabeza espermática por análisis de cluster multivariable durante la adolescencia (12-18 años) y el efecto del varicocele

Voluntarios de adolescentes entre 150 y 224 meses de edad, fueron reclutados en el área de Barranquilla, Colombia.

Los factores genéticos, ambientales y nutricionales tienen una gran influencia en el momento de llegar a la pubertad. Por lo tanto, es difícil predecir la edad en que un individuo particular logrará su madurez reproductiva, es decir, la producción de esperma correspondiente a la de un adulto.

Además, la información biomédica acerca de la edad de la primera eyaculación consciente (oigarche 1 ), la presencia o ausencia de espermatozoides en el líquido seminal, las características biológicas de los espermatozoides durante este proceso de maduración, y el tiempo requerido para alcanzar la espermatogénesis adulto, es actualmente escasa y polémico. Los pocos estudios informados sobre este tema corresponden a adolescentes menores de 18 años y están relacionados con diferentes patologías, como el cáncer testicular.

En este estudio de espermigrama se recluto adolescentes voluntarios de entre 12 y 18 años. El objetivo principal de este estudio fue investigar las características de los espermatozoides en adolescentes entre 12 y 18 años de edad. Estos datos forman parte de un proyecto social llevado a cabo en Barranquilla, Colombia, dirigido a desarrollar un programa de educación sexual debido a la alta tasa de embarazos adolescentes en esta área.

Por lo tanto, es necesario conocer la edad media al inicio de la producción de esperma en adolescentes de esta área para brindar el mejor asesoramiento. Además del espermigrama y la evaluación de la morfología espermática, analizamos el efecto del varicocele y utilizamos el análisis de datos morfométricos para evaluar las subpoblaciones de espermatozoides en muestras de semen humano de estos adolescentes.

 

Artículo completo: https://proiser.com/wp-content/uploads/2019/06/Articulo-adolescentes.pdf

 

camaras desechables de recuento

Cámaras desechables para recuento celular. Una opción para vuestro contaje.

Las cámaras desechables para el recuento celular son una opción sencilla de ayuda en el laboratorio a la hora de realizar los análisis. Hay diversidad de diseños y modelos que se ajustan a las especificaciones de nuestros clientes.

Elige entre los modelos D2C y los D4C, la diferencia la cantidad de muestras por cámara. En ambos modelos tienes para elegir diferentes profundidades:

  • 10 µm: La “clásica” para análisis de semen humano (OMS 1999).
  • 16 µm: Utilizadas en muchos análisis seminales de granjas.
  • 20 µm: Actualmente recomendadas para análisis de semen humano por OMS 2010. Óptimas para veterinaria.

Las cámaras desechables para el recuento celular son cámaras indicadas para cálculos de concentración y análisis de movilidad con sistemas CASA. Los recuadros dibujados aseguran un muestreo óptimo.

Las cámaras desechables para el recuento celular de PROISER cuentan con diseño de llenado y de lectura inteligente:

Diseño de llenado inteligente: cada cámara del portaobjeto tiene una flecha que indica dónde
ubicar la punta, y una línea que indica cuándo detener el proceso de llenado. ¡No más espermatozoides a la deriva!

Diseño de lectura inteligente: se sabe muy bien que obtener una muestra de semen homogénea es difícil. El diseño del portaobjeto mejora la homogeneidad de la concentración de espermatozoides, y le permite obtener un sistema altamente repetible. Al definir 7 áreas
donde se pueden contar los espermatozoides, se eliminarán las variaciones.

Para los laboratorios que no cuenten con analizadores de esperma automatizados está perfectamente indicada la cámara desechable de conteo que cuenta con una cuadrícula para poder realizar el conteo de forma manual. El portaobjeto además dispone de dos áreas una para conteo de espermatozoides y otra para  evaluar la motilidad.

El modelo D4C20L es ideal para trabajar con sistemas de análisis automáticos. Es fiable y económica. Y no es necesario limpiar la cámara. ¡¡Reduce el tiempo invertido en cada análisis!!

cámaras desechables

Son cajas de 25 cámaras para 50 o 100 análisis, dependiendo del modelo.

 

Cómo la competencia sexual puede afectar a la función y calidad del esperma

La presencia de un macho rival influye en la calidad del esperma, según una investigación liderada por la Universidad de Alicante (UA) y la Universidad de Upsala (Suecia).

La presencia de un macho rival influye en la calidad del esperma, según una investigación liderada por la Universidad de Alicante (UA) y la Universidad de Upsala (Suecia). Este trabajo se realizó con peces cebras adultos (Daniorerio), revela que los espermatozoides de machos expuestos a una elevada competencia (dos machos y una hembra) presentan cambios, dando lugar a espermatozoides más rápidos y competitivos. De todas formas, esto no es una buena vía de actuación, ya que con lleva a un cambio en la siguiente generación con respecto a la integridad del ADN.

La metodología que siguieron en la investigación consistió en colocar durante dos semanas dos machos con una hembra y dos hembras con un macho, así se tendría un tratamiento de alta competitividad y otro de baja. Se observó la diferencia en ambos tratamientos y una posible explicación de que traiga efectos negativos en la integridad del ADN es que por la competitividad que se genera en el ambiente haya una alta producción de especies reactivas de oxígenos provocadas por el estrés.

Es decir, la calidad de los espermatozoides de una muestra seminal no depende, de la calidad de los mismos de forma individual, sino más bien de la acción conjunta de diversas subpoblaciones de espermatozoides y además depende de la acción conjunta de los individuos de la especie y sus relaciones de competencia de tipo sexual.

El trabajo fue publicado en la revista científica Journal of Evolutionary Biology.

 

Para más información en el artículo completo en noticiasdeciencia.com

 

evaluar la morfología de los espermatozoides

Evaluar la morfología de los espermatozoides

¿Cómo evaluar la morfología de los espermatozoides?

Aproximadamente el 15% de las parejas tienen problemas de infertilidad. Evaluar la morfología de los espermatozoides es un parámetro importante para la fertilización exitosa. En las técnicas de reproducción asistida (Kuster et al., 2004), los criterios de Kruger (1986) y la clasificación de la OMS son los más importantes. De acuerdo con los criterios de Kruger, la cabeza, el cuello y la cola de los espermatozoides deben ser normales y el acrosoma debe cubrir el 70% de la cabeza.

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Trumorph: El antes y el después de la observación de morfología espermática

Trumorph es una innovadora técnica de observación de morfología espermática es decir, una nueva técnica de observación de los espermatozoides vivos sin tener que someter la muestra a técnicas de secado, fijación y tinción. Es una novedosa técnica que permite una definición clara de todas las características del esperma. Su uso facilitará el desarrollo de un método universal que establezca nuevos criterios para clasificar los espermatozoides en función de su morfología.

El sistema Trumorph es simple, barato y rápido y esto, junto con todas las consideraciones técnicas señaladas anteriormente, hace de esta alternativa una herramienta prometedora para el futuro análisis de la morfología espermática. Ahora estamos trabajando en el diseño del análisis morfológico automático a partir de este tipo de imágenes con tecnología CASA. El trabajo futuro se hará utilizando la técnica trumorph para la cuantificación de diferentes tipos o diferentes morfologías espermáticas y compararlas con las estándar después de someterlos a la tinción y así poder definir qué es un espermatozoide normal y sus implicaciones en la evaluación y estudios de la fertilidad.

Con la técnica Trumorph ¡Solo necesitas 20 segundos para preparar la muestra de semen! Esto supone un importante ahorro de tiempo frente a las técnicas más convencionales puesto que el proceso más corto de preparación de la muestra puede durar aproximadamente  2 horas.

Trumorph además está avalado por distintas publicaciones científicas, y ha sido probado con técnicas tanto humanas como de otros animales.

Los resultados en cuanto a observación de la Morfología espermática son equiparables a las observadas tras utilizar tinciones convencionales, con la ventaja de no introducir artefactos visuales.

Según este estudio este método proporciona una evaluación más precisa de la morfología espermática por lo que la eficacia de los estudios reproductivos que se realizan con este método es mayor. Obteniendo datos de tasa de fertilización mayores.

Si quiere obtener más información sobre Trumorph puede visitar la web:

Acceder al report: https://proiser.com/wp-content/uploads/2019/02/A-new-technique-for-analysis-of-human-sperm-morphology-1.pdf

O bien contacte con nosotros a través de info@proiser.com o mediante el formulario de contacto.

 

ovodonaciones

Ovodonaciones: Nuevo protocolo médico con el 80% de éxito.

Un nuevo protocolo médico permite un 80% de éxito en las ovodonaciones.

Un nuevo protocolo en los tratamientos de fertilidad basados en las ovodonaciones permite lograr el éxito en el 80% de los casos de ovodonaciones. Desarrollado por el equipo del doctor Jan Tesarik, el nuevo protocolo, denominado CODE (CustomisedOocyteDonationEnhancement), se ha dado a conocer en el último número de la revista británica European Medical Journal.

Según el doctor Tesarik, la clave de protocolo reside en la utilización de óvulos no congelados, donados por mujeres jóvenes y una preparación personalizada para cada paciente. Con la edad de la mujer, disminuyen tanto la cantidad de óvulos disponibles en sus ovarios (reserva ovárica) como la calidad de cada uno de ellos. Aunque las posibilidades de tener hijos con sus propios óvulos, incluso para las mujeres de edades relativamente avanzadas, han aumentado considerablemente en los últimos años, para la mayoría de mujeres de 40 años o más, las ovodonaciones representan la alternativa más eficiente y con una mejor relación coste beneficio. Sin embargo, la donación de óvulos tampoco tiene un éxito en 100% de los casos.

En nuestro programa de ovodonaciones -explica Tesarik- utilizamos óvulos no congelados, y de donantes muy jóvenes, de máximo 25 años de edad, cuando la ley española fija la edad máxima de donante a 35 años”. La relación entre la edad de la donante y la probabilidad de embarazo en la receptora de los óvulos es bien conocida desde 1997. En aquellas fechas,  la tasa de embarazo era del 26,6% con donantes de más de 32 años y del 43,5% con donantes más jóvenes. En los últimos 20 años, gracias a los avances en la FIV las tasas de embarazo han aumentado, sin embargo se mantiene la diferencia en la tasa de éxito utilizando óvulos no congelados frente a los congelados, que es del 51,1% frente al 30,7% respectivamente, según un análisis de 30160 tentativas de donación de óvulos realizadas en Estados Unidos, publicado este año.

 

 

El protocolo CORE surgió a partir del análisis de los casos de fracaso de donación de óvulos. “Y nos dimos cuenta -explica Tesarik- de que, casi nunca, es una casualidad”. Así, las mujeres que quedaban embarazadas en la primera vez no tenían problemas cuando decidían tener otro hijo. En paralelo, existían casos de fracasos repetidos en las mismas parejas. Un análisis meticuloso de estos casos indicaba que, aunque la causa principal sea la baja calidad de los óvulos, esta condición fue acompañada de otros tipos de problemas que la donación de óvulos por sí misma no puede resolver. La base del protocolo CODE es la individualización de la acción diagnóstica y terapéutica en cada pareja que entra en el programa de donación de los óvulos. “La mayoría de estas parejas tiene una amplia historia de tratamientos previos de infertilidad, y es importante analizar meticulosamente todos los datos disponibles”, subraya el doctor Tesarik. “Por ejemplo, si el tratamiento FIV no dio resultados esperados cuando la mujer era joven y con una buena reserva ovárica, tenía que haber una causa, que tampoco se resolvería utilizando los óvulos de donante”.

 

El primer paso del protocolo CODE consiste en la búsqueda de todos los problemas, de la mujer y del hombre, no relacionados con la calidad de los óvulos. En los hombres, el problema “oculto” más frecuente es la fragmentación excesiva del ADN de los espermatozoides. En las mujeres se buscan formaciones patológicas (pólipos o adherencias) en la cavidad uterina, anomalías de flujo sanguíneo en el útero, adenomiosis, y anomalías endocrinas, tales la diabetes y prediabetes, o disfunción de la glándula tiroidea.

 

Después de la resolución terapéutica de las anomalías detectadas, la paciente entra en el protocolo de la preparación de su útero para acoger los embriones formados utilizando los óvulos donados. Durante este periodo es muy importante respectar las particularidades de la respuesta de cada mujer a los tratamientos recibidos. En el protocolo CODE se realizan por lo menos tres exámenes en esta fase de preparación, incluyendo no sólo la evaluación ecográfica del revestimiento interno de la cavidad uterina (endometrio), sino también los valores hormonales en la sangre. Según los resultados obtenidos, el protocolo puede ser modificado para asegurar el crecimiento adecuado del endometrio. En algunos casos puede ayudar la inclusión de la hormona de crecimiento para mejorar la evolución del endometrio en casos resistentes al tratamiento convencional.

La tercera fase del protocolo CODE se centra en el periodo posterior a la transferencia de los embriones. “Las mujeres que reciben embriones formados con óvulos donados– concluye Tesarik- sufren anomalías de las concentraciones de diferentes hormonas, sobre todo de la progesterona, en la sangre con más frecuencia en comparación con la reproducción natural o incluso con la FIV con los propios óvulos de la paciente. Este riesgo tiene que ser controlado por los análisis de la sangre el mismo día de la transferencia de los embriones y después por lo menos una vez antes del primer test de embarazo. La detección de una anomalía se puede corregir inmediatamente, sin esperar el resultado del test del embarazo, cuando ya es demasiado tarde para actuar de una manera efectiva”. (Fuente: MARGEN)

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