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Análisis de esperma multiespecie: ISAS V1

Los análisis de esperma son pruebas cada vez más extendidas entre la población animal y humana. De ahí que cada vez haya una mayor oferta de sistemas en el mercado y, por extensión, sea cada vez más necesario tener sistemas que ofrezcan mayor eficacia en los resultados obtenidos.

En Proiser somos conscientes de ello, de ahí que hayamos desarrollado el método ISAS V1, un sistema que reúne herramientas para ser usadas tanto en clínicas como en investigaciones. Sus campos de aplicación es tanto el ámbito de la ciencias humanas como en las que están relacionadas con la veterinaria, la investigación científica, la producción ganadera o la toxicología farmacéutica y reproductiva. 

ISAS V1 está considerado, actualmente, como el sistema de análisis de esperma más completo y fácil de usar de cuantos podemos encontrar en el mercado. Esto se debe, principalmente, a que funciona en diferentes condiciones de hardware y con distintos sistemas operativos, por lo que se adapta a las necesidades de todo tipo de usuarios.

Caption from DNA Fragmentation-. ISAS V1 

ISAS V1: Qué es y qué aplicaciones tiene

ISAS V1 es un sistema de análisis de esperma apto para múltiples especies, por lo que puede funcionar con diferentes muestras de esperma. Da igual que se trata de analizar la muestra de esperma de un hombre, de un caballo, de un toro, de un cerdo, de una cabra, conejo, perro, rata, ratones, gallo, cordero, bacalao, tiburón, atún o anguila, es válido para todos ellos. Esto no implica que ISAS V1 aplique siempre los mismos parámetros. Todo lo contrario, cada especie tiene sus propios algoritmos de configuración y origina un análisis independiente. 

Dependiendo de la muestra, ISAS V1 puede usar contraste de fase negativo o positivo. El análisis de la motilidad de un campo se realiza en tiempo real (menos de un segundo), y se puede configurar para analizar la motilidad hasta 250 fotogramas, a 200 fotogramas por segundo y con concentraciones superiores a 1000 espermatozoides/ campo.

Además de la concentración, de la motilidad y del porcentaje de progresivos, con ISAS V1 se calculan también los siguientes parámetros cinéticos: VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOD, ALH, BCF, DNC, MAD, entre otros.

Hay que tener en cuenta también que ISAS V1 funciona con cámaras de hasta 200 fotogramas por segundo, lo que permite realizar un análisis de seguimiento casi perfecto del comportamiento de los espermatozoides. 

Además, está especialmente diseñado para programas de control de calidad, permitiendo el análisis de archivos de video de muchos formatos diferentes (Windows AVI, Windows Media Video, MPEG-4, DV entre otros). También permite obtener imágenes, lo que facilita que se pueda tener colecciones de videos e imágenes para el análisis fuera de línea de movilidad, concentración, morfología, vitalidad o fragmentación del ADN.

Otra aplicación de ISAS V1 es el análisis morfológico y morfométrico de espermatozoides a partir de muestras teñidas o frescas (utilizando la óptica de contraste de fase). 

Este trabajo ofrece datos de 14 parámetros morfométricos: tamaño de cabeza (área, longitud, ancho y perímetro), forma de la cabeza (elipticidad, elongación, aspereza y regularidad), porcentaje de acrosoma, nivel de color de la cabeza, tamaño de la pieza central (área y ancho) e inserción de la pieza media (ángulo y distancia).

Con ISAS V1 también podemos conocer los datos referidos al porcentaje de espermatozoides fragmentados. Para ello emplea objetivos de 20x o 40x en tiempo real (menos de 1 segundo). 

Finalmente, hay que destacar que ISAS V1 también aporta datos sobre viabilidad automática de las células espermáticas. Esto es especialmente interesante pues necesitamos determinar el porcentaje real de células viables que hay en una muestra, y para llevar a cabo con precisión este análisis, empleamos técnicas de fluorescencia con su correspondiente uso de kits de tinción.

ISAS V1

Caption From Vitality test-. ISAS V1

Particularidades del sistema ISAS V1

El equipo actual de ISAS V1 es completamente modular, por lo que cada parte del mismo puede funcionar de forma independiente y conjunta. 

Además, hemos diseñado el sistema para permitir que se utilice la mayoría de los componentes que puede encontrarse en cada tipo de laboratorio, desde el microscopio al ordenador, siempre y cuando cumplan los requisitos mínimos del sistema. 

Así pues, si buscas un sistema con el que poder hacer análisis de esperma multiespecie de gran calidad y poder obtener un gran número de datos, no lo dudes y ven a Proiser. Encontrarás todo lo que necesitas.

 

spermtrack cámara de conteo

Efectos combinados de tipo y profundidad de una cámara de conteo, y tasa de captura de cuadros de imagen, sobre motilidad y cinemática de esperma de toro. La evaluación de la calidad del semen requiere métodos precisos, confiables y objetivos.

La evaluación de la calidad del semen requiere métodos precisos, confiables y objetivos para examinar las variables espermáticas, incluida la motilidad espermática. Para la preparación de muestras de semen para inseminación artificial, como recurso genético, las muestras que se usan para la inseminación deben tener la capacidad de dar como resultado una tasa de fertilidad altamente aceptable. Se han desarrollado varios métodos para la evaluación de semen de toro en condiciones de laboratorio y para la preparación de dosis para inseminación artificial.

spermtrack cámara de conteo

Spermtrack®

Los análisis de semen realizados por un sistema CASA pueden proporcionar información objetiva sobre varias variables del semen. Sin embargo, este equipo requiere calibraciones finas considerando las diferencias entre especies, razas y condiciones para la evaluación de muestras y análisis de datos. En el presente estudio, se examinó la interacción entre factores como la velocidad de fotogramas de la imagen y el tipo y la profundidad de la cámara de recuento en la que se evaluaron los espermatozoides, junto con las diferencias entre toros de cuatro razas. El uso de la cámara de conteo reusable Spermtrack® de 10 μm de profundidad proporcionó resultados más confiables que los resultados obtenidos utilizando la cámara de conteo desechable (10 y 20 μm de profundidad). Se requiere una tasa de captura de al menos 90 fps para la evaluación del porcentaje de motilidad de los espermatozoides, mientras que se necesita una tasa de 250 fps para obtener datos cinemáticos consistentes. Las diferencias entre razas en el presente estudio indican que las condiciones para los análisis de esperma deben incluir calibraciones de equipos específicos para cada raza. Estos resultados contribuyen al desarrollo de condiciones más precisas para las evaluaciones de la calidad del semen de toro teniendo en cuenta las diferencias de raza y el requisito que cada raza tiene para la evaluación adecuada y la preparación de muestras para inseminación artificial.

computer assessed counting

Computer assessed counting analysis (CASA)

 

combined effects of cou

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Sistema CASA de análisis espermático

Un sistema CASA de análisis espermático es aquel que tiene como objetivo fundamental realizar un análisis preciso, basado en la repetición y realizado de manera automática, de algunos parámetros que aparecen en una muestra espermática.

Los datos más habituales que se solicitan y ofrecen son: concentración, movilidad, morfología, fragmentación de ADN, vitalidad, reacción del acrosoma y leucocitos.

Aunque hay sistemas que, dependiendo de su complejidad y de las variables que trabajan, ofrecen más o menos resultados en este sentido.

 

Sistema CASA

Sistema CASA de análisis espermático

En la empresa valenciana Proiser llevan más de 25 años trabajando e investigando en esta área. De hecho, son los responsables del Sistema ISAS (Sistema Integrado de Análisis de Semen) , uno de los más prestigiosos del mercado. De ahí que haya recibido numerosos reconocimientos a nivel internacional donde se refieren a él como un elemento indispensable para trabajar adecuadamente en el sector.

Así, gracias a los equipos de investigación, la empresa Proiser ha logrado formar un equipo compacto de desarrolladores de software y científicos, capaces de interactuar y de compartir la información que el cliente necesita.

La irrupción del sistema ISAS en el mercado fue revolucionaria. No sólo porque era la primera solución de este tipo presentada en el mercado. Sino porque marcó un antes y un después en el entorno del diagnóstico de las muestras de semen.

En la actualidad hay variaciones de este concepto que se pueden adquirir en empresas especializadas, aunque la solución ofrecida por Proiser sigue liderando el mercado dada la gran diferencia existente con la competencia. Y es que seguimos inspirando a quienes se dedican a este sector.

Existen aplicaciones adaptadas a las particularidades de cada animal con el que se trabaja. Así, en Proiser ponemos al alcance de los profesionales sistemas de análisis de semen bovino, porcino, de zorros, caballos o incluso de conejos. De manera que puedas conseguir el mejor de los resultados posible.

 

Mucho más que análisis espermático

Para que puedas trabajar con los mejores materiales en la empresa valenciana Proiser también tenemos: cámaras de recuento espermático, placas y platinas calefactadas, así como kits de tinción y de reactivos. Además, de poner a tu disposición software para microscopios, sistemas de medición de ovocitos y todo tipo de microscopios. Elementos de gran calidad con los que poder desarrollar trabajos de gran envergadura.

Así pues, si buscas un sistema de análisis espermático que te dé datos fiables sobre la calidad del material que tienes, no lo dudes y hazte con nuestro sistema CASA de análisis. No sólo tendrás datos fiables, sino que podrás realizar tu trabajo con un mínimo de error.

No lo dudes y ponte en contacto con nosotros. Nuestro sistema es líder del mercado y nuestra atención al cliente y servicio de soporte también.

Sistema CASA

evaluar la morfología de los espermatozoides

Evaluar la morfología de los espermatozoides

¿Cómo evaluar la morfología de los espermatozoides?

Aproximadamente el 15% de las parejas tienen problemas de infertilidad. Evaluar la morfología de los espermatozoides es un parámetro importante para la fertilización exitosa. En las técnicas de reproducción asistida (Kuster et al., 2004), los criterios de Kruger (1986) y la clasificación de la OMS son los más importantes. De acuerdo con los criterios de Kruger, la cabeza, el cuello y la cola de los espermatozoides deben ser normales y el acrosoma debe cubrir el 70% de la cabeza.

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ovodonaciones

Ovodonaciones: Nuevo protocolo médico con el 80% de éxito.

Un nuevo protocolo médico permite un 80% de éxito en las ovodonaciones.

Un nuevo protocolo en los tratamientos de fertilidad basados en las ovodonaciones permite lograr el éxito en el 80% de los casos de ovodonaciones. Desarrollado por el equipo del doctor Jan Tesarik, el nuevo protocolo, denominado CODE (CustomisedOocyteDonationEnhancement), se ha dado a conocer en el último número de la revista británica European Medical Journal.

Según el doctor Tesarik, la clave de protocolo reside en la utilización de óvulos no congelados, donados por mujeres jóvenes y una preparación personalizada para cada paciente. Con la edad de la mujer, disminuyen tanto la cantidad de óvulos disponibles en sus ovarios (reserva ovárica) como la calidad de cada uno de ellos. Aunque las posibilidades de tener hijos con sus propios óvulos, incluso para las mujeres de edades relativamente avanzadas, han aumentado considerablemente en los últimos años, para la mayoría de mujeres de 40 años o más, las ovodonaciones representan la alternativa más eficiente y con una mejor relación coste beneficio. Sin embargo, la donación de óvulos tampoco tiene un éxito en 100% de los casos.

En nuestro programa de ovodonaciones -explica Tesarik- utilizamos óvulos no congelados, y de donantes muy jóvenes, de máximo 25 años de edad, cuando la ley española fija la edad máxima de donante a 35 años”. La relación entre la edad de la donante y la probabilidad de embarazo en la receptora de los óvulos es bien conocida desde 1997. En aquellas fechas,  la tasa de embarazo era del 26,6% con donantes de más de 32 años y del 43,5% con donantes más jóvenes. En los últimos 20 años, gracias a los avances en la FIV las tasas de embarazo han aumentado, sin embargo se mantiene la diferencia en la tasa de éxito utilizando óvulos no congelados frente a los congelados, que es del 51,1% frente al 30,7% respectivamente, según un análisis de 30160 tentativas de donación de óvulos realizadas en Estados Unidos, publicado este año.

 

 

El protocolo CORE surgió a partir del análisis de los casos de fracaso de donación de óvulos. “Y nos dimos cuenta -explica Tesarik- de que, casi nunca, es una casualidad”. Así, las mujeres que quedaban embarazadas en la primera vez no tenían problemas cuando decidían tener otro hijo. En paralelo, existían casos de fracasos repetidos en las mismas parejas. Un análisis meticuloso de estos casos indicaba que, aunque la causa principal sea la baja calidad de los óvulos, esta condición fue acompañada de otros tipos de problemas que la donación de óvulos por sí misma no puede resolver. La base del protocolo CODE es la individualización de la acción diagnóstica y terapéutica en cada pareja que entra en el programa de donación de los óvulos. “La mayoría de estas parejas tiene una amplia historia de tratamientos previos de infertilidad, y es importante analizar meticulosamente todos los datos disponibles”, subraya el doctor Tesarik. “Por ejemplo, si el tratamiento FIV no dio resultados esperados cuando la mujer era joven y con una buena reserva ovárica, tenía que haber una causa, que tampoco se resolvería utilizando los óvulos de donante”.

 

El primer paso del protocolo CODE consiste en la búsqueda de todos los problemas, de la mujer y del hombre, no relacionados con la calidad de los óvulos. En los hombres, el problema “oculto” más frecuente es la fragmentación excesiva del ADN de los espermatozoides. En las mujeres se buscan formaciones patológicas (pólipos o adherencias) en la cavidad uterina, anomalías de flujo sanguíneo en el útero, adenomiosis, y anomalías endocrinas, tales la diabetes y prediabetes, o disfunción de la glándula tiroidea.

 

Después de la resolución terapéutica de las anomalías detectadas, la paciente entra en el protocolo de la preparación de su útero para acoger los embriones formados utilizando los óvulos donados. Durante este periodo es muy importante respectar las particularidades de la respuesta de cada mujer a los tratamientos recibidos. En el protocolo CODE se realizan por lo menos tres exámenes en esta fase de preparación, incluyendo no sólo la evaluación ecográfica del revestimiento interno de la cavidad uterina (endometrio), sino también los valores hormonales en la sangre. Según los resultados obtenidos, el protocolo puede ser modificado para asegurar el crecimiento adecuado del endometrio. En algunos casos puede ayudar la inclusión de la hormona de crecimiento para mejorar la evolución del endometrio en casos resistentes al tratamiento convencional.

La tercera fase del protocolo CODE se centra en el periodo posterior a la transferencia de los embriones. “Las mujeres que reciben embriones formados con óvulos donados– concluye Tesarik- sufren anomalías de las concentraciones de diferentes hormonas, sobre todo de la progesterona, en la sangre con más frecuencia en comparación con la reproducción natural o incluso con la FIV con los propios óvulos de la paciente. Este riesgo tiene que ser controlado por los análisis de la sangre el mismo día de la transferencia de los embriones y después por lo menos una vez antes del primer test de embarazo. La detección de una anomalía se puede corregir inmediatamente, sin esperar el resultado del test del embarazo, cuando ya es demasiado tarde para actuar de una manera efectiva”. (Fuente: MARGEN)

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